AMS dating groundwater

Datation au radiocarbone du carbone organique dissous (Dissolved Organic Carbon, DOC) de l’eau douce (salinité ≤ 0,5 0/00) *Bientôt disponible*

recommended sample size Taille d’échantillon recommandée
  • 1 L (veuillez contacter le laboratoire avant d’envoyer des échantillons)
  • Le laboratoire datera uniquement les échantillons filtrés (0,7 micron ou moins) avec une concentration minimale de DOC de 5,0 mg/L. Les mesures de concentration de DOC et l’extraction du DOC sont facturées par Beta Analytic.
  • Veuillez nous contacter avant d’envoyer des échantillons inférieurs au volume recommandé.
recommended container Contenants recommandés
  • Bouteilles en verre ambré à usage unique avec le moins d’espace libre possible; flacons en verre ambré à col étroit avec bouchons fermés. Les bouteilles doivent être NEUVES et n’avoir jamais été utilisées à quelque fin que ce soit.
  • Flacons Nalgene lavés à l’acide avec 10 % HCl (aq)
lab recommendation
  • REMARQUE : À l’heure actuelle, nous fournissons UNIQUEMENT une analyse du carbone 14 du DOC sur des échantillons d’eau douce. Nous fournissons une analyse DOC au carbone 13 sur les eaux douces et saumâtres.

  • Veuillez NE PAS prétraiter les échantillons avec des produits chimiques. Remarque : Nous ne pouvons pas accepter les échantillons qui ont été traités avec du chlorure de mercure (II) (HgCl2) ou de l’azoture de sodium (NaN3). Nous n’avons pas les capacités d’élimination de ces substances toxiques.

  • Si vos échantillons d’eau contiennent du sel à une concentration supérieure à 0,5 ppt (partie pour mille), veuillez en informer le laboratoire.

Remarque – Les tarifs comprennent les mesures du δ13C, les rapports d’assurance qualité et l’accès Internet 24h/24 et 7j/7 aux résultats antérieurs et aux analyses en cours. Des frais d’extraction du DOC s’appliquent en plus du prix standard. Des frais supplémentaires sont facturés si les mesures isotopiques d’oxygène-18 et d’hydrogène-2 sont demandées. Obtenir un devis

Limites d’échantillonnage

printed sampleNous sommes un laboratoire de datation au carbone 14 de niveau NATUREL et ne pouvons pas accepter d’échantillons d’eau qui ont été prélevés dans une zone proche d’une centrale nucléaire, de réacteurs commerciaux ou médicaux, de sites d’élimination de déchets industriels/médicaux ou de leurs zones de drainage. Les échantillons d’eau ne doivent pas avoir été stockés ou manipulés dans un laboratoire ou une zone qui utilise OU a déjà utilisé du carbone 14 biomédical ou artificiellement marqué à aucun moment.

Si vous soupçonnez que vos échantillons peuvent de quelque manière que ce soit avoir des niveaux de carbone 14 supérieurs au niveau du “carbone bombe”(~ 200 pMC / 2,0 F14C), veuillez NE PAS les envoyer. Les échantillons d’eau qui produisent des activités supérieures à 200 pMC entraîneront des coûts importants liés à tout nettoyage nécessaire, au remplacement de l’équipement et aux analyses supplémentaires requises pour d’autres échantillons. Ces coûts pourraient facilement atteindre des dizaines de milliers de dollars dont vous seriez responsable en tant qu’expéditeur des échantillons.

Prélèvement

 
  1. Assurez-vous de prélever les échantillons à la profondeur que vous souhaitez étudier.

  2. Des flacons de type Nalgene peuvent être utilisés pour le prélèvement, mais le verre est préférable et fortement recommandé pour un stockage à long terme.

    Les bouteilles en plastique et en verre doivent être pré-nettoyées dans un bain d’acide chlorhydrique (HCl) à 10 % et rincées avec de l’eau déminéralisée (DI) pour éliminer tout contaminant éventuel. Les bouteilles en verre doivent également être chauffées à 450˚C pendant 6 heures pour s’assurer qu’il n’y a pas de contaminants présents.

  3. Rincez soigneusement la bouteille avec l’échantillon au moins 3 fois avant de prélever l’échantillon final à l’aide d’un filtre à eau. Utilisez un filtre dont la taille des pores est comprise entre 0,2 et 0,7 μm. Si les échantillons ne sont pas filtrés, la signature DOC risque de changer pendant le transport des échantillons.

  4. Remplissez la bouteille avec le moins d’espace libre possible.

  5. Si les échantillons doivent être conservés pendant un certain temps, ils doivent être réfrigérés entre 3 et 5 ˚C (37 et 41 ˚F).

  6. Scellez l’espace entre la bouteille et le bouchon avec du ruban adhésif pour empêcher l’échange de dioxyde de carbone (CO2) avec l’atmosphère pendant le transport.

Autres recommandations

  • Veuillez identifier clairement l’extérieur de la bouteille avec le code de l’échantillon à l’encre indélébile ou sur une étiquette inviolable.
  • Il est utile de mesurer le pH, la salinité, l’absorption UV spécifique (λ254 nm) et la concentration en DOC avant l’envoi, mais cela n’est pas obligatoire.
  • N’ajoutez aucun produit chimique aux échantillons d’eau lors de la collecte, y compris des acides ou des composés courants de conservation des échantillons. Si les échantillons sont pré-acidifiés, veuillez contacter le laboratoire.

Si possible, les échantillons doivent être envoyés réfrigérés ou froids (NON congelés). Les pains de glace de premier secours sont parfaits pour cela, car ils évitent que les échantillons ne chauffent trop pendant le transport.

Avant de placer vos échantillons dans une glacière ou un carton, veuillez mettre les bouteilles dans un sac en plastique fermé. Veuillez utiliser des cartons avec suffisamment de papier bulle pour éviter toute casse.
REMARQUE : Beta Analytic NE RETOURNE PAS les échantillons d’eau, bouteilles ou réfrigérants.

Nous vous recommandons d’envoyer vos échantillons par transporteur spécialisé. Merci de nous communiquer par mail le nom du transporteur et le numéro de suivi de votre colis afin que nous puissions suivre son acheminement.

Le carbone organique dissous (DOC) est le plus grand réservoir de matière organique et de carbone réduit dans les océans, d’une taille à peu près équivalente à celle du CO2 dans l’atmosphère (Beaupré 2007). Le DOC se retrouve également dans les écosystèmes terrestres et joue un rôle important dans le cycle global du carbone, en partie en raison de sa capacité à transporter le carbone entre différents bassins de l’écosystème (Kolka 2008). Le DOC peut provenir de l’extérieur de l’écosystème (carbone atmosphérique, transport sur de longues distances) ou de l’intérieur de celui-ci (plantes / organismes microbiens ou sols / sédiments). Des niveaux élevés de matières organiques ne sont pas rares dans les environnements contenant moins d’oxygène, tels que les marécages (Bruckner 2016).

La mesure du radiocarbone dans le DOC est un outil utile pour identifier les sources et les processus cycliques du DOC dans les eaux naturelles, tant en eau douce que marine (Xue 2015). Alors que les âges absolus peuvent à eux seuls fournir des informations sur les sources de carbone contenues dans le DOC, ils sont d’autant plus utiles lorsqu’ils sont combinés à des informations complémentaires, telles que les mesures du 13C ou d’autres mesures d’isotopes stables à partir de nutriments tels que le phosphate ou le nitrate. Cela est dû au rôle du DOC dans le cycle des nutriments et leur disponibilité dans les écosystèmes.

Parallèlement aux autres nutriments présents dans l’écosystème, les mesures du radiocarbone et des isotopes stables dans le DOC permettent de brosser un tableau plus complet de la santé d’un écosystème. Lorsque des échantillons sont collectés le long d’un transect dans un bassin versant, une zone agricole, etc., les données peuvent être utilisées pour quantifier les contributions au pool de DOC provenant de sources de carbone anciennes et modernes, déterminer la qualité de l’eau et l’impact sur un écosystème particulier. Par exemple, une zone vierge et peu touchée des Everglades en Floride aura un âge radiocarbone moderne ou presque moderne, indiquant une contribution relativement faible des « anciennes » sources de carbone comme les gisements de tourbe et des contributions élevées de sources modernes, principalement dues à l’absorption de CO2 atmosphérique par les plantes en C3 indigènes des zones humides (Stern 2007).

Références:

  1. Beaupré, S. R., Druffel, E. R., & Griffin, S. A low‐blank photochemical extraction system for concentration and isotopic analyses of marine dissolved organic carbon. Limnology and Oceanography: Methods, 2007, 5(6), 174-184.
  2. Kolka, Randall, Peter Weishampel, and Mats Fröberg. Measurement and importance of dissolved organic carbon. Field measurements for forest carbon monitoring. Springer, Dordrecht, 2008. 171-176.
  3. Stern, J., et al. Distribution and turnover of carbon in natural and constructed wetlands in the Florida Everglades. Applied Geochemistry, 2007, 22,,1936-1948.
  4. Xue, Y., Ge, T., & Wang, X. An effective method of UV-oxidation of dissolved organic carbon in natural waters for radiocarbon analysis by accelerator mass spectrometry. Journal of Ocean University of China, 2015, 14(6), 989-993.
  5. Xu, L., et al. Radiocarbon in Dissolved Organic Carbon by UV Oxidation: Procedures and Blanks Characterization at NOSAMS. Radiocarbon, 2021, 63, 357-374

Dernière mise à jour: mars 2022